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細胞培養

細胞培養(Cell   culture)是指在體外模擬體內環境(無菌、適宜溫度、PH值和某些營養條件),使之生存、生長、一種復制和保持主要結構和功能的方法。細胞培養也叫細胞克隆技術,生物學上的正式術語是細胞培養技術。無論對于整個生物工程技術還是生物克隆技術之一,細胞培養都是必不可少的過程,細胞培養本身就是細胞的大規??寺 <毎囵B技術可以將一個細胞經過大量培養后轉化為簡單的單細胞或分化很少的多細胞,這是克隆技術必不可少的環節,細胞培養本身就是細胞克隆。細胞培養技術是細胞生物學研究方法中一項重要且常用的技術通過細胞培養,可以獲得大量的細胞,可以研究細胞的信號轉導、細胞的合成代謝、細胞生長和增殖等。

目錄

種類劃分

動物細胞培養

細胞培養細胞培養

在所有的體外細胞培養中,動物細胞培養是最困難的。以下是它需要的特殊條件:

⑴血清:動物細胞的體外培養經常需要血清。最常用的是小牛血清。血清提供生長必需因子,如激素、微量元素、礦物質和脂肪。在這里,血清等于動物細胞體外培養的天然營養液。

⑵支持物:大多數動物細胞都有貼壁的習慣。體外培養常用玻璃塑料等作為支持。

⑶氣體交換:在細胞培養過程中要不斷調整二氧化碳和氧氣的比例,以維持所需的氣體條件。

植物細胞培養

⑴光照:體外培養的植物細胞對光照條件要求不高,因為細胞生長所需的物質主要由培養基供給。然而,光不僅與光合作用有關,還與細胞分化有關例如,光周期可以調節性細胞分化和開花,因此在以獲得植株為目的的早期植物細胞培養過程中,光照條件尤為重要。通過植物細胞的體外培養獲得重要物質如藥物的過程,其中大多數細胞在反應器中懸浮培養。

⑵激素:植物細胞的分裂和生長需要植物激素的調節,而促進細胞分裂的生長素和有絲分裂素是最基本的激素。植物細胞的分裂生長分化和個體生長周期受相應的激素調控。相對于動物細胞,植物細胞體外培養的激素需求原理已經了解,其應用技術已經相當成熟,已經有一套可用的培養基。同時解決了植物細胞對水敏感的問題、營養物、激素、滲透壓、酸堿度、對微量元素的需求等。

微生物細胞培養

微生物多為單細胞生物,野外生存條件較為簡單。因此,人工培養微生物的條件比動植物細胞簡單得多。其中厭氧微生物的培養比好氧微生物更復雜,因為嚴格厭氧需要維持二氧化碳等非氧惰性氣體的濃度,而好氧微生物只需要通過不斷攪拌提供無菌氧氣。微生物對培養條件的要求不如動植物細胞和玉米漿、蛋白胨、麥芽汁、酵母膏成為微生物良好的天然培養基。對于一些特殊微生物的營養需求,可以在這些天然培養基的基礎上添加。

環境條件

環境因素

1.無菌環境

無毒和無菌是細胞體外培養的首要條件。在體內,解毒系統和免疫系統可以抵御微生物或其他有害物質的入侵,但在體外培養過程中,細胞缺乏免疫系統的保護,失去了對微生物的防御能力和對有害物質的解毒能力。為了保證細胞能夠在體外生長繁殖,需要保證無菌的工作區域、良好的個人衛生、無菌試劑培養基和無菌操作。

常見的微生物污染是支原體、細菌、真菌。支原體無致死毒性,可與細胞長期共存,對細胞有潛在影響,但體積小,不易鑒定,可通過地衣紅或Hoechst33342染色等方法檢測。細菌繁殖很快,可以在短時間內放大,產生毒素殺死細胞。真菌種類很多,肉眼可見,漂浮在培養面上,可呈絲狀、管狀或樹枝狀等。

2.合適的溫度

一般哺乳動物和鳥類細胞體外培養的適宜溫度為37 ~ 38℃,不適宜的環境溫度會影響細胞的生長。細胞對低溫的耐受性強于對高溫的耐受性低溫下,細胞的代謝活性和有絲分裂能力下降。如果溫度不低于0℃,細胞代謝雖受影響,但無損傷;在25 ~ 35℃時,細胞生長緩慢;但是如果在40℃下放置幾個小時,不僅不利于細胞的存活、成長甚至會導致它的死亡。

3.適宜的滲透壓

高滲溶液或低滲溶液都會導致細胞折疊、腫脹、破裂。因此,滲透壓是細胞體外培養的重要條件之一。大多數體外培養的細胞對滲透壓都有一定的耐受力,在實際應用中為260~320mmol/L的滲透壓適用于大多數細胞。

4.氣體環境與pH

體外細胞培養需要一個理想的氣體環境,氧氣、二氧化碳是細胞生存的必要條件。氧氣參與了細胞的活動細胞存活的三羧酸循環、新陳代謝和合成提供能量;二氧化碳不僅是細胞的代謝產物,也是細胞生長的必需成分,還與維持培養基的pH值有關。大多數細胞適宜的pH值范圍通常是7.2~7.4。在開放文化中,5%二氧化碳氣體的比例合適。

營養條件

1.培養基

細胞培養基含有細胞生長所需的各種營養物質,包括碳水化合物、氨基酸、無機鹽、維生素等。根據不同細胞的營養需求,有許多合成培養基可供選擇,如EBSS、Eagle、MEM、RPMll640、DMEM等。

2.其他添加成分

除了各種合成培養基提供的基本營養成分外,還需要根據不同的細胞和不同的培養目的添加血清等其他成分、因子等。

血清提供細胞外基質、胎牛血清常用作生長因子轉鐵蛋白等重要物質。血清的比例要根據不同的細胞和不同的研究目的來確定。10%~20%血清能維持細胞的快速生長和增殖,稱為生長培養基;為了維持細胞的緩慢生長或永生,加2%~5%血清可以稱為維持培養基。但血清中也有對細胞生長繁殖有害的物質,如補體、免疫球蛋白和一些生長抑制因子;成分不清影響結果分析;不同動物、不同批次的血清活性差異較大,影響培養效果的穩定性。

谷氨酰胺是細胞生長的重要氮源,在細胞生長和代謝過程中起著重要作用但由于谷氨酰胺不穩定,在溶液中易降解,在4℃放置7天,可分解50左右%所以使用前要添加谷氨酰胺。

設施器材

設施超凈臺、恒溫培養箱、倒置顯微鏡液氮儲存罐電熱鼓風干燥箱、冰柜、電子天平、恒溫水浴槽、離心機、壓力蒸汽消毒器。
器材:
一、玻璃器材
培養皿、滴流瓶、刻度吸管、離心管、培養瓶燒杯量筒、三角燒瓶
二、塑料器材
多孔培養板、培養皿、培養瓶
三、橡皮器材
橡皮制品(最好是硅制品)做各種瓶或試管的塞子、蓋子。
四、金屬器材
剪刀、鑷子、手術刀、解剖刀、血管鉗、組織鑷、眼科鑷及各種型號針頭
五、其他物品
紗布、注射器和針頭

一般過程

一、準備工作
準備工作對開展細胞培養異常重要,工作量也較大,應給予足夠的重視,準備工作中某一環節的疏忽可導致實驗失敗或無法進行。準備工作的內容包括器皿的清洗、干燥與消毒,培養基與其他試劑的配制、分裝及滅菌,無菌室或超凈臺的清潔與消毒,培養箱及其他儀器的檢查與調試,具體內容可參閱有關文獻。
二、取材
在無菌環境下從機體取出某種組織細胞(視實驗目的而定),經過一定的處理(如消化分散細胞、分離等)后接入培養器皿中,這一過程稱為取材。如是細胞株的擴大培養則無取材這一過程。機體取出的組織細胞的首次培養稱為原代培養。理論上講各種動物和人體內的所有組織都可以用于培養,實際上幼體組織(尤其是胚胎組織)比成年個體的組織容易培養,分化程度低的組織比分化高的容易培養,腫瘤組織比正常組織容易培養。取材后應立即處理,盡快培養,因故不能馬上培養時,可將組織塊切成黃豆般大的小塊,置4℃的培養液中保存。取組織時應嚴格保持無菌,同時也要避免接觸其他的有害物質。取病理組織和皮膚及消化道上皮細胞時容易帶菌,為減少污染可用抗菌素處理。由組織并分離分散細胞的方法可參閱有關文獻。
三、培養
將取得的組織細胞接入培養瓶或培養板中的過程稱為培養。如系組織塊培養,則直接將組織塊接入培養器皿底部,幾個小時后組織塊可貼牢在底部,再加入培養基。如系細胞培養,一般應在接入培養器皿之前進行細胞計數,按要求以一定的量(以每毫升細胞數表示)接入培養器皿并直接加入培養基。細胞進入培養器皿后,立即放入培養箱中,使細胞盡早進入生長狀態。正在培養中的細胞應每隔一定時間觀察一次,觀察的內容包括細胞是否生長良好,形態是否正常,有無污染,培養基的PH是否太酸或太堿(由酚紅指示劑指示),此外對培養溫度和CO2濃度也要定時檢查。一般原代培養進入培養后有一段潛伏期(數小時到數十天不等),在潛伏期細胞一般不分裂,但可貼壁和游走。過了潛伏期后細胞進入旺盛的分裂生長期。細胞長滿瓶底后要進行傳代培養,將一瓶中的細胞消化懸浮后分至兩到三瓶繼續培養。每傳代一次稱為“一代”。二倍體細胞一般只能傳幾十代,而轉化細胞系或細胞株則可無限地傳代下去。轉化細胞可能具有惡性性質,也可能僅有不死性(Immortality)而無惡性。培養正在生長中的細胞是進行各種生物醫學實驗的良好材料。
四、凍存及復蘇
為了保存細胞,特別是不易獲得的突變型細胞或細胞株,要將細胞凍存。凍存的溫度一般用液氮的溫度—-196℃,將細胞收集至凍存管中加入含保護劑(一般為二甲亞或甘油)的培養基,以一定的冷卻速度凍存,最終保存于液氮中。在極低的溫度下,細胞保存的時間幾乎是無限的。復蘇一般采用快融方法,即從液氮中取出凍存管后,立即放入37℃水中,使之在一分鐘內迅速融解。然后將細胞轉入培養器皿中進行培養。凍存過程中保護劑的選用、細胞密度、降溫速度及復蘇時溫度、融化速度等都對細胞活力有影響。

具體步驟

一、細胞復蘇
將凍存細胞從液氮中取出后,在37℃水浴鍋內不斷搖動促進其融化。移人15ml離心管中,加入10ml預熱的DMEM完全培養基,輕輕吹勻,離心,2000rpmX2min,棄上清液。加入10ml DMEM培養基清洗,棄上清液。加入10ml DMEM完全培養基,輕輕吹打,接種于10cm盤中,在含5%CO2的細胞培養箱中培養。
二、細胞傳代
細胞密度達到80%~90%時.去培養基,10ml PBS清洗2次。加入3ml含0.25%EDTA的胰蛋白酶,放人細胞培養箱3min。加人1ml DMEM完全培養基終止胰酶消化,轉移至15ml離心管。加入10ml PBS清洗細胞培養盤,轉移至15ml離心管,2000rpmX2min,棄上清液。再加入10ml PBS(經高壓滅菌,保存于40C),吹勻,吸取10微升進行計數,按照1×10/盤接種,在含5%CO2的細胞培養箱繼續培養。
三、細胞凍存
細胞密度達到80%~90%時,去培養基,10ml PBS清洗2次。加入3ml含0.25%EDTA的胰蛋白酶,放人細胞培養箱3min。加入lmlDMEM完全培養基終止胰酶消化,轉移至15ml離心管。加入10ml PBS清洗細胞培養盤,轉移至15ml離心管,2000rpmX2min,棄上清液。加入lml凍存液(90%血清,10%DMSO),放入凍存盒內(盒內有異丙醇,以保證溫度降低的速度),立即放入一80℃冰箱內,過夜,第二天放入液氮中,可以保存至少兩年,如不放入液氮,可以保存三個月。
凍存液的配制:70%的完全培養基+20%FBS+10%DMSO.DMSO要慢慢滴加,邊滴邊搖。

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